• -resistent.a MHK
• +resistent. a MHK
• -lin bestimmt.b
• +lin bestimmt. b
• -Tazobactam.c Bei
• +Tazobactam. c Bei
• -verwendet.1 EUCAST
• +verwendet. 1 EUCAST
• -rt.2 Die meisten S.
• -aureus sind Penicill
• -inase-Produzenten
• -und einige sind
• -Methicillin-resisten
• -t. Beide Mechanismen
• - machen sie resisten
• -t gegen Benzylpenici
• -llin, Phenoxymethylp
• -enicillin, Ampicilli
• -n, Amoxicillin,
• -Piperacillin und
• -Ticarcillin. Isolate
• -, die gegenüber
• -Benzylpenicillin
• -und Cefoxitin als
• -empfindlich getestet
• - werden, können
• -gegenüber allen
• -Penicillinen als
• -empfindlich gemeldet
• - werden. Isolate,
• -die gegen Benzylpeni
• -cillin als resistent
• -, aber gegenüber
• -Cefoxitin als
• -empfindlich getestet
• - werden, sind
• -empfindlich gegenübe
• -r β-Lactam-β-Lactama
• -se-Inhibitor-Kombina
• -tionen, den Isoxazol
• -ylpenicillinen
• -(Oxacillin, Cloxacil
• -lin, Dicloxacillin
• -und Flucloxacillin)
• -und Nafcillin. Bei
• -oral verabreichten
• -Wirkstoffen ist
• -darauf zu achten,
• -dass an der Infektio
• -nsstelle eine
• -ausreichende Exposit
• -ion erreicht wird.
• +rt. 2 Die meisten
• +S. aureus sind
• +Penicillinase-Produz
• +enten und einige
• +sind Methicillin-res
• +istent. Beide
• +Mechanismen machen
• +sie resistent gegen
• +Benzylpenicillin,
• +Phenoxymethylpenicil
• +lin, Ampicillin,
• +Amoxicillin, Piperac
• +illin und Ticarcilli
• +n. Isolate, die
• +gegenüber Benzylpeni
• +cillin und Cefoxitin
• + als empfindlich
• +getestet werden,
• +können gegenüber
• +allen Penicillinen
• +als empfindlich
• +gemeldet werden.
• -Cefoxitin als
• +Benzylpenicillin
• +als resistent, aber
• +gegenüber Cefoxitin
• +als empfindlich
• +getestet werden,
• +sind empfindlich
• +gegenüber β-Lactam-β
• +-Lactamase-Inhibitor
• +-Kombinationen, den
• +Isoxazolylpenicillin
• +en (Oxacillin,
• +Cloxacillin, Dicloxa
• +cillin und Flucloxac
• +illin) und Nafcillin
• +. Bei oral verabreic
• +hten Wirkstoffen
• +ist darauf zu
• +achten, dass an der
• +Infektionsstelle
• +eine ausreichende
• +Exposition erreicht
• +wird. Isolate, die
• +gegen Cefoxitin als
• -itor).3 Aus Ampicill
• -in kann auf eine
• +itor). 3 Aus Ampicil
• +lin kann auf eine
• -häufig.4 Die Empfind
• -lichkeit der Strepto
• -kokken-Gruppen A,
• -B, C und G gegenüber
• - Penicillinen wird
• -aus der Benzylpenici
• -llin-Empfindlichkeit
• - (andere Indikatione
• -n als Meningitis)
• -abgeleitet, mit
• -Ausnahme von Phenoxy
• -methylpenicillin
• -und Isoxazolylpenici
• -llinen für Streptoko
• -kken-Gruppe B.5 Der
• -Oxacillin 1 μg-Disk-
• -Screen-Test oder
• -ein Benzylpenicillin
• --MHK-Test ist zu
• -verwenden, um
• -Beta-Lactam-Resisten
• -zmechanismen auszusc
• -hliessen. Wenn das
• -Screening negativ
• -ist (Oxacillin-Hemmh
• -of ≥20 mm oder
• -Benzylpenicillin-MHK
• - ≤0.06 mg/l),
• +häufig. 4 Die
• +Empfindlichkeit der
• +Streptokokken-Gruppe
• +n A, B, C und G
• +gegenüber Penicillin
• +en wird aus der
• +Benzylpenicillin-Emp
• +findlichkeit (andere
• + Indikationen als
• +Meningitis) abgeleit
• +et, mit Ausnahme
• +von Phenoxymethylpen
• +icillin und Isoxazol
• +ylpenicillinen für
• +Streptokokken-Gruppe
• + B. 5 Der Oxacillin
• +1 μg-Disk-Screen-Tes
• +t oder ein Benzylpen
• +icillin-MHK-Test
• +ist zu verwenden,
• +um Beta-Lactam-Resis
• +tenzmechanismen
• +auszuschliessen.
• +Wenn das Screening
• +negativ ist (Oxacill
• +in-Hemmhof ≥20 mm
• +oder Benzylpenicilli
• +n-MHK ≤0.06 mg/l),
• -klinischen Nutzen.6
• -Benzylpenicillin
• +klinischen Nutzen.
• +6 Benzylpenicillin
• -abgeleitet.7 Zum
• +abgeleitet. 7 Zum
• -zu sehen ist.8 Die
• +zu sehen ist. 8 Die
• -http://www.eucast.org.ATCC = American Type Culture
• -Collection1 Zur Prüfung der Inhibitor Komponente (siehe
• -Routine Qualitätskontrolle für β-Lactam-Inhibitor-Kombin
• -ationen) kann entweder E. coli ATCC 35218 oder K.
• -pneumoniae ATCC 700603 verwendet werden.E. coli ATCC
• -25922 ist zur Kontrolle der Piperacillin-Komponente zu
• -verwenden (gemäss der Methodik für E. coli).* Bei
• -diesem Stamm werden normalerweise zwei Arten von
• -Kolonien beobachtet, die bei der Subkultivierung und
• -Testung des Stamms berücksichtigt werden sollten.
• +http://www.eucast.org. ATCC = American Type Culture
• +Collection 1 Zur Prüfung der Inhibitor Komponente
• +(siehe Routine Qualitätskontrolle für
• +β-Lactam-Inhibitor-Kombinationen) kann entweder E. coli
• +ATCC 35218 oder K. pneumoniae ATCC 700603 verwendet
• +werden. E. coli ATCC 25922 ist zur Kontrolle der
• +Piperacillin-Komponente zu verwenden (gemäss der
• +Methodik für E. coli). * Bei diesem Stamm werden
• +normalerweise zwei Arten von Kolonien beobachtet, die
• +bei der Subkultivierung und Testung des Stamms
• +berücksichtigt werden sollten.
• -Aerobe grampositive Mikroorganismen Aerobe gramnegative Mikroorganisme
• - n
• -Enterococcus faecalis (nur ampicillin- oder Citrobacter koseriHaemophilus
• -penicillinempfindliche Isolate)Listeria influenzaeMoraxella catarrhalisPro
• -monocytogenesStaphylococcus aureus (nur teus mirabilis
• -methicillinempfindliche Isolate)Staphylococcus spp.,
• -koagulase-negativ (nur methicillinempfindliche
• -Isolate)Streptococcus agalactiae (Gruppe B
• -Streptokokken)†Streptococcus pyogenes (Gruppe A Streptokokken)†
• -Anaerobe grampositive Mikroorganismen Anaerobe gramnegative
• - Mikroorganismen
• -Clostridium spp.Eubacterium spp.Anaerobe gram-positive Kokken†† Bacteroides fragilis GruppeFusobac
• - terium spp.Porphyromonas
• - spp.Prevotella spp
• +Aerobe grampositive Mikroorganismen Aerobe gramnegative Mikroorganismen
• +Enterococcus faecalis (nur ampicillin- oder Citrobacter koseri Haemophilus
• +penicillinempfindliche Isolate) Listeria monocytogenes influenzae Moraxella catarrhalis
• +Staphylococcus aureus (nur methicillinempfindliche Isolate) Proteus mirabilis
• +Staphylococcus spp., koagulase-negativ (nur
• +methicillinempfindliche Isolate) Streptococcus agalactiae
• +(Gruppe B Streptokokken)† Streptococcus pyogenes (Gruppe A
• +Streptokokken)†
• +Anaerobe grampositive Mikroorganismen Anaerobe gramnegative Mikroorganism
• + en
• +Clostridium spp. Eubacterium spp. Anaerobe gram-positive Bacteroides fragilis Gruppe
• +Kokken†† Fusobacterium spp. Porphyromonas
• + spp. Prevotella spp
• -Aerobe grampositive Mikroorganismen Aerobe gramnegative Mikroorganisme
• - n
• -Enterococcus faeciumStreptococcus pneumoniae††Streptokokken Acinetobacter baumanniiCitrobacter
• -der Viridans-Gruppe†† freundiiEnterobacter
• - spp.Escherichia coliKlebsiella
• - pneumoniaeMorganella morganiiProte
• - us vulgarisProvidencia
• - spp.Pseudomonas aeruginosaSerratia
• - spp.
• +Aerobe grampositive Mikroorganismen Aerobe gramnegative Mikroorganismen
• +Enterococcus faecium Streptococcus pneumoniae†† Streptokokken Acinetobacter baumannii
• +der Viridans-Gruppe†† Citrobacter freundii Enterobacter
• + spp. Escherichia coli Klebsiella
• + pneumoniae Morganella morganii
• + Proteus vulgaris Providencia spp.
• + Pseudomonas aeruginosa Serratia
• + spp.
• -Aerobe grampositive Mikroorganismen Aerobe gramnegative Mikroorganisme
• - n
• -Corynebacterium jeikeium Burkholderia cepaciaLegionella
• - spp.Stenotrophomonas maltophilia
• -Sonstige Mikroorganismen
• -Chlamydophila pneumoniaeMycoplasma pneumoniae
• +Aerobe grampositive Mikroorganismen Aerobe gramnegative Mikroorganismen
• +Corynebacterium jeikeium Burkholderia cepacia Legionella
• + spp. Stenotrophomonas maltophilia
• +Sonstige Mikroorganismen
• +Chlamydophila pneumoniae Mycoplasma pneumoniae
• -Organismus Jahr Empfindlichkeit(%) N
• -Acinetobacter spp.* 2011 86,4 1061
• -2012 77,9 901
• -2013 78,7 834
• -Citrobacter koseri* 2011 95,2 1405
• -2012 89,9 1575
• -2013 95,0 1791
• -Citrobacter non-koseri* 2011 83,6 1435
• -2012 80,6 1430
• -2013 81,9 1598
• -Enterobacter spp.* 2011 78,9 4989
• -2012 77,1 5041
• -2013 77,5 5498
• -Escherichia coli* 2011 92,2 53541
• -2012 92,0 58208
• -2013 92,1 62567
• -Klebsiella oxytoca* 2011 91,8 2522
• -2012 90,3 2630
• -2013 88,1 2878
• -Klebsiella pneumoniae* 2011 90,1 8560
• -2012 89,9 9340
• -2013 88,1 10071
• -Morganella morganii* 2011 88,3 1150
• -2012 89,2 1296
• -2013 93,3 1542
• -Proteus mirabilis* 2011 98,6 4534
• -2012 97,9 4731
• -2013 98,5 5037
• -Proteus non-mirabilis* 2011 95,3 1199
• -2012 95,8 1291
• -2013 98,0 1470
• -Pseudomonas aeruginosa* 2011 88,8 9487
• -2012 85,9 9763
• -2013 84,9 10348
• -Serratia spp.* 2011 96,0 1545
• -2012 94,0 1707
• -2013 96,1 2072
• -Enterococcus faecalis** 2011 95,5 3910
• -2012 94,4 3416
• -2013 95,7 3602
• -Enterococcus faecium** 2011 14,5 1267
• -2012 13,1 895
• -2013 13,6 898
• -Enterococcus spp.(nicht bis auf Spezies-Level bestimmt)** 2011 90,6 2448
• -2012 95,3 803
• -2013 96,2 1057
• -Neisseria gonorrhoeae** 2011 25,8 124
• -2012 24,1 108
• -2013 18,0 128
• -Neisseria meningitidis** 2011 73,3 30
• -2012 67,9 28
• -2013 53,6 28
• -Staphylococcus aureus** 2011 22,9 22049
• -2012 20,7 21399
• -2013 21,3 21232
• -Staphylococcus saprophyticus** 2011 22,2 481
• -2012 12,3 779
• -2013 13,1 918
• -Staphylococcus, koagulase-negativ, non saprophyticus** 2011 19,0 15145
• -2012 16,8 14809
• -2013 17,3 15666
• -Streptococcus pneumoniae** 2011 90,8 2104
• -2012 90,2 1821
• -2013 91,0 1950
• +Organismus Jahr Empfindlichkeit(%) N
• +Acinetobacter spp.* 2011 86,4 1061
• +2012 77,9 901
• +2013 78,7 834
• +Citrobacter koseri* 2011 95,2 1405
• +2012 89,9 1575
• +2013 95,0 1791
• +Citrobacter non-koseri* 2011 83,6 1435
• +2012 80,6 1430
• +2013 81,9 1598
• +Enterobacter spp.* 2011 78,9 4989
• +2012 77,1 5041
• +2013 77,5 5498
• +Escherichia coli* 2011 92,2 53541
• +2012 92,0 58208
• +2013 92,1 62567
• +Klebsiella oxytoca* 2011 91,8 2522
• +2012 90,3 2630
• +2013 88,1 2878
• +Klebsiella pneumoniae* 2011 90,1 8560
• +2012 89,9 9340
• +2013 88,1 10071
• +Morganella morganii* 2011 88,3 1150
• +2012 89,2 1296
• +2013 93,3 1542
• +Proteus mirabilis* 2011 98,6 4534
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• +2013 98,5 5037
• +Proteus non-mirabilis* 2011 95,3 1199
• +2012 95,8 1291
• +2013 98,0 1470
• +Pseudomonas aeruginosa* 2011 88,8 9487
• +2012 85,9 9763
• +2013 84,9 10348
• +Serratia spp.* 2011 96,0 1545
• +2012 94,0 1707
• +2013 96,1 2072
• +Enterococcus faecalis** 2011 95,5 3910
• +2012 94,4 3416
• +2013 95,7 3602
• +Enterococcus faecium** 2011 14,5 1267
• +2012 13,1 895
• +2013 13,6 898
• +Enterococcus spp. (nicht bis auf Spezies-Level bestimmt)** 2011 90,6 2448
• +2012 95,3 803
• +2013 96,2 1057
• +Neisseria gonorrhoeae** 2011 25,8 124
• +2012 24,1 108
• +2013 18,0 128
• +Neisseria meningitidis** 2011 73,3 30
• +2012 67,9 28
• +2013 53,6 28
• +Staphylococcus aureus** 2011 22,9 22049
• +2012 20,7 21399
• +2013 21,3 21232
• +Staphylococcus saprophyticus** 2011 22,2 481
• +2012 12,3 779
• +2013 13,1 918
• +Staphylococcus, koagulase-negativ, non saprophyticus** 2011 19,0 15145
• +2012 16,8 14809
• +2013 17,3 15666
• +Streptococcus pneumoniae** 2011 90,8 2104
• +2012 90,2 1821
• +2013 91,0 1950
• -Piperacillin/Tazobac Inhalt einer Durchstechflasche Wasser für Injektionszwecke*,Koch
• -tam Sandoz Piperacillin/Tazobactam Sandoz salzlösung 0,9%
• -Piperacillin/Tazobac 2,25 g 10 ml bis 50 ml
• -tam Sandoz
• -Piperacillin/Tazobac 4,5 g 20 ml bis 50 ml
• -tam Sandoz
• +Piperacillin/Tazobac Inhalt einer Durchstechflasche Wasser für Injektionszwecke*,
• +tam Sandoz Piperacillin/Tazobactam Sandoz Kochsalzlösung 0,9%
• +Piperacillin/Tazobac 2,25 g 10 ml bis 50 ml
• +tam Sandoz
• +Piperacillin/Tazobac 4,5 g 20 ml bis 50 ml
• +tam Sandoz